Перевиваемая сублиния клеток A4 C2 /9к и ее использование в исследованиях с вирусом африканской чумы свиней

Статья в Elpub

Вопросы вирусологии. 2015; 60: 43-47

Перевиваемая сублиния клеток A4 C2 /9к и ее использование в исследованиях с вирусом африканской чумы свиней

Балышева В. И., Прудникова Е. Ю., Гальнбек Т. В., Балышев В. М.

Аннотация

Получена новая высокочувствительная к вирусу африканской чумы свиней (АЧС) перевиваемая сублиния клеток А ₄С ₂/9к. Все испытуемые штаммы этого вируса, выделенные в Российской Федерации в 2008 - 2013 гг., размножались в этой культуре клеток с проявлением гемадсорбции (Гад) и накапливались в титре до 6,5 lg ГАЕ ₅₀/см ³. Культуру клеток А ₄С ₂/9к можно применять для выделения, определения инфекционной активности и серотиповой принадлежности вируса АЧС. Культуральные варианты штамма Ставрополь 01/08 вируса АЧС 24-го и 33-го пассажей в культуре клеток А ₄С ₂/9к утратили патогенность для свиней.

Список литературы

1. Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации африканской чумы свиней. М.; 1980.

2. Куриннов В.В., Колбасов Д.В., Цыбанов С.Ж., Васильев А.П., Шендрик А.Г., Балышев В.М. и др. Африканская чума свиней – главная проблема для свиноводства России. Жизнь без опасностей. Здоровье. Профилактика. Долголетие. 2010; 3: 8–7.

3. Эпизоотическая ситуация по АЧС на территории Российской Федерации в 2013 г. Официальный сайт Россельхознадзора: 2013. Available at: http://www.fsvps.ru/news/7210.html.

4. Коваленко Я.Р. Африканская чума свиней. М.: Колос; 1972.

5. ГОСТ 28573–90. Методы лабораторной диагностики африканской чумы свиней. М.; 1990.

6. Селянинов Ю.О., Балышев В.М., Цыбанов С.Ж. Вирус африканской чумы свиней: физическое картирование генома штаммов. Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2000; 5: 75–6.

7. Almendral J.M., Blasco R., Ley V., Beloso A., Talaver A., Vinuela E. Restriction site map of African swine fever virus DNA. Virology. 1984; 133: 258–70.

8. Carrascossa A.L., Bustos M.J., de Leon P. Methods for Growing and Titrating African Swine Fever Virus: Field and Laboratory Samples. Curr. Protoc. Cell Biol. 2011; 53: 26.14.1–26.14.25.

9. Carrascosa A.L., Bustos M.J., Nogal M.L., Gonzalez de Buitrago G., Revilla Y. Apoptosis induced in an early step of African swine virus entry into Vero cell does not require virus replication. Virology. 2002; 294: 372–82.

10. Tabares E., Olivares I., Santurde C., Garcia M.J., Martine E., Carnero M.E. African swine fever virus DNA: deletion and addition during adaptation to growth in monkey kidney cells. Arch. Virol. 1987; 97: 333–46.

11. Дьяконов Л.П., Гальнбек Т.В., Щекалова И.В. Внутривидовая гибридная культура клеток СПЭВ ТК- ×лимфоциты свиньи. Сельскохозяйственная биология.1996; 2: 25–30.

12. Прудникова Е.Ю., Балышев В.М., Юрков С.Г., Гальнбек Т.В., Балышева В.И. Адаптация вируса африканской чумы свиней к перевиваемым культурам клеток. Научный журнал КубГАУ Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского аграрного университета. 2012; 80 (06). Available at: http://ej.kubagro.ru/2012/06/pdf/32.pdf.

13. Балышев В.М., Болгова М.В., Черятников Л.Л., Калантаенко Ю.Ф., Юрков С.Г. Методические положения по типизации вируса африканской чумы свиней в реакции задержки гемадсорбции. ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии. Покров, 2010.

Problems of Virology. 2015; 60: 43-47

Continuous cell subline A4 C2 /9K and its application to the african swine fever virus study

Balysheva V. I., Prudnikova E. Yu., Galnbek T. V., Balyshev V. M.

Abstract

A new continuous cell subline A ₄C ₂/9K highly sensitive to the african swine fever virus (ASFV) was prepared. All the tested ASFV strains isolated in the Russian Federation in 2008-2013 proliferated in this cell culture exhibiting hemadsorption and accumulated at a titer of up to 6.5 lg HAU ₅₀/cm ³. The cell culture A ₄C ₂/9K can be used for ASFV isolation or determination of its infectious activity and serotype identity. The culture versions of the ASFV strain Stavropol 01/08 at passages 24 and 33 in the cell culture A ₄C ₂/9K lost their pathogenicity for pigs.

References

1. Instruktsiya o meropriyatiyakh po preduprezhdeniyu i likvidatsii afrikanskoi chumy svinei. M.; 1980.

2. Kurinnov V.V., Kolbasov D.V., Tsybanov S.Zh., Vasil'ev A.P., Shendrik A.G., Balyshev V.M. i dr. Afrikanskaya chuma svinei – glavnaya problema dlya svinovodstva Rossii. Zhizn' bez opasnostei. Zdorov'e. Profilaktika. Dolgoletie. 2010; 3: 8–7.

3. Epizooticheskaya situatsiya po AChS na territorii Rossiiskoi Federatsii v 2013 g. Ofitsial'nyi sait Rossel'khoznadzora: 2013. Available at: http://www.fsvps.ru/news/7210.html.

4. Kovalenko Ya.R. Afrikanskaya chuma svinei. M.: Kolos; 1972.

5. GOST 28573–90. Metody laboratornoi diagnostiki afrikanskoi chumy svinei. M.; 1990.

6. Selyaninov Yu.O., Balyshev V.M., Tsybanov S.Zh. Virus afrikanskoi chumy svinei: fizicheskoe kartirovanie genoma shtammov. Vestnik Rossiiskoi akademii sel'skokhozyaistvennykh nauk. 2000; 5: 75–6.

7. Almendral J.M., Blasco R., Ley V., Beloso A., Talaver A., Vinuela E. Restriction site map of African swine fever virus DNA. Virology. 1984; 133: 258–70.

8. Carrascossa A.L., Bustos M.J., de Leon P. Methods for Growing and Titrating African Swine Fever Virus: Field and Laboratory Samples. Curr. Protoc. Cell Biol. 2011; 53: 26.14.1–26.14.25.

11. D'yakonov L.P., Gal'nbek T.V., Shchekalova I.V. Vnutrividovaya gibridnaya kul'tura kletok SPEV TK- ×limfotsity svin'i. Sel'skokhozyaistvennaya biologiya.1996; 2: 25–30.

12. Prudnikova E.Yu., Balyshev V.M., Yurkov S.G., Gal'nbek T.V., Balysheva V.I. Adaptatsiya virusa afrikanskoi chumy svinei k perevivaemym kul'turam kletok. Nauchnyi zhurnal KubGAU Politematicheskii setevoi elektronnyi nauchnyi zhurnal Kubanskogo agrarnogo universiteta. 2012; 80 (06). Available at: http://ej.kubagro.ru/2012/06/pdf/32.pdf.

13. Balyshev V.M., Bolgova M.V., Cheryatnikov L.L., Kalantaenko Yu.F., Yurkov S.G. Metodicheskie polozheniya po tipizatsii virusa afrikanskoi chumy svinei v reaktsii zaderzhki gemadsorbtsii. GNU VNIIVViM Rossel'khozakademii. Pokrov, 2010.